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Erstmals konnte eine zCarotinDesaturase einer höheren Pflanze nach heterologer Expression in E. coli in nativer Form gereinigt und enzymatisch charakterisiert werden. Dazu wurde die cDNA der CapsicumZDS in einen Expressionsvektor kloniert, der die ZDS als rekombinantes Polypeptid mit 6 Nterminalen Histidinen exprimierte. Dadurch konnte das Enzym in nur zwei Schritten über eine Kombination von Ammoniumsulfatfällung und MetallionenAffinitätschromatographie selektiv aus E. coli separiert werden. Die ZDS wurde ohne eine mutmaßliche Transitsequenz als ein Polypeptid von 59 kDa exprimiert. Das pH Optimum der ZDSAktivtität liegt bei 7,2 in der Nähe der rechnerisch ermittelten pIWertes von 7,4. Die ZDS führt zwei Desaturierungsschritte ausgehend von zCarotin zu Lycopin als ein monomeres Protein durch. Unter Verwendung des TwoHybridSystems, einer Gelelektrophorese unter nativen Bedingungen und einer Gelfiltration der nativen ZDS, konnte gezeigt werden, daß die ZDS als Monomer und als Dimer vorliegen kann. Die Dimerisierung der ZDS ist jedoch für deren enzymatischer Aktivität und für die Durchführung beider Desaturierungsschritte nicht notwendig. Für die Substratcarotinoide zCarotin und Neurosporin, wurden die Km Werte von 8,4 µM und 9,0 µM bestimmt. Die CapsicumZDS zeigt von ihrer Aminosäuresequenz her eine große Ähnlichkeit zu den cyanobakteriellen zCarotinDesaturasen und eine geringere Ähnlichkeit zu den pflanzlichen Phytoendesaturasen. Eine diskutierte phylogenetische Verwandtschaft der zCarotin und Phytoendesaturase aus höheren Pflanzen und Cyanobakterien wird durch die Verwendung des gleichen Kofaktors Plastochinon und durch die gemeinsame Hemmbarkeit mit den zCarotinDesaturaseHemmstoffen J852 und LS80707 unterstützt. Eine Kofaktoruntersuchung ergab, daß Plastochinon sowohl der Kofaktor der ZDS aus Capsicum, als auch der Phytoendesaturasen aus Gentiana lutea (gelber Entian), aus dem Cyanobakterium Synechococcus sp. PCC 7942, sowie der z CarotinDesaturase aus Synechocystis sp. PCC 6803 ist. Der Km Wert von Decyl Plastochinon wurde für die CapsicumZDS zu 0,4 µM bestimmt. Der Kofaktor der z CarotinDesaturase Plastochinon, sowie die Entdeckung einer plastidären terminalen Oxidase (Carol et al., 1999) ermöglicht die Entwicklung eines Modells der Übertragung der bei der Desaturierung von zCarotin gewonnenen Elektronen über Plastochinon auf Sauerstoff, wie es bereits für die pflanzliche Phytoendesaturase postuliert wurde (Carol
The red yeast Xanthophyllomyces dendrorhous is an established platform for the synthesis of carotenoids. It was used for the generation of novel multi oxygenated carotenoid structures. This was achieved by a combinatorial approach starting with the selection of a β-carotene accumulating mutant, stepwise pathway engineering by integration of three microbial genes into the genome and finally the chemical reduction of the resulting 4,4’-diketo-nostoxanthin (2,3,2’,3’-tetrahydroxy-4,4’-diketo-β-carotene) and 4-keto-nostoxanthin (2,3,2’,3’-tetrahydroxy-4-monoketo-β-carotene). Both keto carotenoids and the resulting 4,4’-dihydroxy-nostoxanthin (2,3,4,2’,3’,4’-hexahydroxy-β-carotene) and 4-hydroxy-nostoxanthin (2,3,4,2’3’-pentahydroxy-β-carotene) were separated by high-performance liquid chromatography (HPLC) and analyzed by mass spectrometry. Their molecular masses and fragmentation patterns allowed the unequivocal identification of all four carotenoids.
The biosynthesis pathway to diadinoxanthin and fucoxanthin was elucidated in Phaeodactylum tricornutum by a combined approach involving metabolite analysis identification of gene function. For the initial steps leading to β-carotene, putative genes were selected from the genomic database and the function of several of them identified by genetic pathway complementation in Escherichia coli. They included genes encoding a phytoene synthase, a phytoene desaturase, a ζ-carotene desaturase, and a lycopene β-cyclase. Intermediates of the pathway beyond β-carotene, present in trace amounts, were separated by TLC and identified as violaxanthin and neoxanthin in the enriched fraction. Neoxanthin is a branching point for the synthesis of both diadinoxanthin and fucoxanthin and the mechanisms for their formation were proposed. A single isomerization of one of the allenic double bounds in neoxanthin yields diadinoxanhin. Two reactions, hydroxylation at C8 in combination with a keto-enol tautomerization and acetylation of the 3′-HO group results in the formation of fucoxanthin.