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Es wird das Mikrowellenspektrum eines symmetrischen Kreisels (tert.-Butyljodid) untersucht, in dem sich die HFS-Komponenten des Schwingungsgrundzustandes mit denen einiger angeregten Vibrationszustände überlagern. Dabei gelingt es, eine allgemeine Methode zur Analyse eines mit den genannten Schwierigkeiten behafteten Spektrums zu entwickeln. Die Auswertung ergibt im Falle des tert.-Butyljodids folgende Konstanten: e Q q = -1709,5 ± 5,5 MHz, B = 1560,60 ± 0,01 MHz, DJ = 0,20 ± 0,10 kHz, DJK = 0,70 ± 0,07 kHz, rC-J = 2,190 ± 0,005 Å.
The syntheses of the dibenzoquinolizinium-salts 3, 13, 16, 20 and 25 which are of spectroscopic interest are described. Their electronic excitation spectra will be published later by Perkampus and coworkers in this journal.
Darstellung und Eigenschaften des Coenzymanalogen Nicotinamid-4-methyl-5-acetyl-imidazol-dinucleotid
(1970)
Kondensation des Quecksilbersalzes von 4-Methyl-5-acetyl-imidazol ** mit 1-Chlor-2.3.5-O-tribenzoyl-ribofuranose liefert das geschützte Ribosid 3. Zur Strukturaufklärung der Verbindung wurde 4-Methyl-5-acetyl-1-(β-D-0-2′.3′.5′-triacetyl-ribofuranosyl)-imidazol mit Methyljodid in das 3.4-Dimethyl-5-acetyl-1-(β-D-O-2′.3′.5′-triacetyl-ribofuranosyl)-imidazoliumjodid überführt und der Zuckerrest hydrolytisch gespalten. Das entstandene Imidazol-Derivat ist identisch mit 1.5-Dimethyl-4-acetyl-imidazol. 4-Methyl-5-acetyl-1- (β-D-ribofuranosyl) -imidazol wurde mit Aceton in das Isopropyliden-Derivat 4 überführt. Die Phosphorylierung zum Nucleosid-5′-phosphat (5) führten wir mit β-Cyanäthyl-phosphat durch. Durch Kondensation mit Nicotinamid-mononucleotid erhielten wir das Coenzymanaloge Nicotinamid-4-methyl-5-acetyl-imidazol-dinucleotid (6). Die Verbindung liegt im oxydierten Zustand in gefaltener Form vor. Das Fluoreszenz-Anregungsspektrum der Dihydroverbindung zeigt keine Energieübertragung vom nichtfunktionellen 4-Methyl-5-acetyl-imidazol-Teil auf den Dihydronicotinamid-Ring. Das Coenzymanaloge weist eine größere Michaelis- Konstante im Test mit Lactat-Dehydrogenase aus Schweineherz *** auf als das natürliche Nicotinamid-adenindinucleotid ***. Die maximale Umsatzzahl ist trotz der schwächeren Bindung vergrößert. Das unterschiedliche Verhalten des Coenzymanalogen 6 gegenüber NAD läßt, neben der π-Bindung des nichtfunktionellen Teils, eine polare Gruppe im aktiven Zentrum des Enzyms vermuten, die die Ausrichtung des Coenzyms im Coenzym-Enzym-Komplex bewirkt.
Dihydronicotinamid-4-methyl-5-acetyl-imidazol-dinucleotid bildet einen fluoreszierenden Komplex mit der Lactat-Dehydrogenase, der dem des NADH-LDH-Komplexes sehr ähnlich ist.
At pH 5.3 and 4.5 the half life of valyl-, threonyl-, leucyl- and seryl-tRNA from E. coli K 12 is significantly higher than at pH 6.8. While no changes were observed in the MAK elution patterns of valyl- and threonyl-tRNA, leucyl-tRNA was eluted in two peaks at pH 6.8 and 5.3 and in one broad peak at pH 4.5. Seryl-TRNA - two peaks at pH 6.8 - was separated in three peaks at pH 5.3 and 4.5. Rechromatography of these peaks at the other pH suggests the existence of at least four species of seryl-tRNA in E. coli K 12.
The interactions between human haptoglobin, Hp II (genetic types 2 - 1 and 2-2), and bovine hemoglobin, Hb, were investigated taking inhibition of complex formation and complex dissociation in various solvent media as criteria.
As shown by relative peroxidase activity and gel chromatography, complex dissociation occurs at high concentrations of guanidine HCl, urea, sodium chloride, dioxane, and formaldehyde, while in case of sodium dodecylsulfate a low molar ratio (SDS/Hb -Hp<5) is sufficient to split the complex. In general the formation of the complex stabilizes the structure of its constituents.
Excluding solvent conditions which lead to denaturation (as measured by optical rotation), ionpairs and H-bonds seem to prevail in the stabilization of the complex, while hydrophobic interactions should be of minor importance. Chemical modification of histidine and tyrosine with diazonium-1-H-tetrazole and N-acetylimidazole, respectively, prove histidyl-groups in Hb and tyrosylgroups in Hp to participate in the Hb-Hp contact, thus confirming earlier results.