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Positive-strand RNA viruses such as hepatitis C virus (HCV) hijack key factors of lipid metabolism of infected cells and extensively modify intracellular membranes to support the viral lifecycle. While lipid metabolism plays key roles in viral particle assembly and maturation, viral RNA synthesis is closely linked to the remodeling of intracellular membranes. The formation of viral replication factories requires a number of interactions between virus proteins and host factors including lipids. The structure–function relationship of those proteins is influenced by their lipid environments and lipids that selectively modulate protein function. Here, we review our current understanding on the roles of phospholipids in HCV replication and of lipid–protein interactions in the structure–function relationship of the NS5A protein. NS5A is a key factor in membrane remodeling in HCV-infected cells and is known to recruit phosphatidylinositol 4-kinase III alpha to generate phosphatidylinositol 4-phosphate at the sites of replication. The dynamic interplay between lipids and viral proteins within intracellular membranes is likely key towards understanding basic mechanisms in the pathobiology of virus diseases, the mode of action of specific antiviral agents and related drug resistance mechanisms.
Each lifecycle of the Hepatitis C virus (HCV) produces structural and non-structural (NS) proteins in equimolar. Structural proteins were either assembled or degraded by host proteolysis systems, while NS proteins remain inside the host cells and don’t accumulate. Therefore, they must be degraded. Here, NS3 and NS5A half-lives were quantified in the presence of autolysosome and proteasome different modulators. Inhibitors of both systems increased the half-life, while inducers decreased the half-life. Furthermore, polyubiquitination of NS3 and NS5A was observed. Additionally, their intracellular co-localization with autolysosome (LAMP2) and proteasome (PSMB5) was observed, and inhibitors of both systems increased the degree of co-localization. A better understanding of NS protein degradation might help to improve medical interventions during HCV infections in the future.
Each lifecycle of the Hepatitis C virus (HCV) produces structural and non-structural (NS) proteins in equimolar. Structural proteins were either assembled or degraded by host proteolysis systems, while NS proteins remain inside the host cells and don’t accumulate. Therefore, they must be degraded. Here, NS3 and NS5A half-lives were quantified in the presence of autolysosome and proteasome different modulators. Inhibitors of both systems increased the half-life, while inducers decreased the half-life. Furthermore, polyubiquitination of NS3 and NS5A was observed. Additionally, their intracellular co-localization with autolysosome (LAMP2) and proteasome (PSMB5) was observed, and inhibitors of both systems increased the degree of co-localization. A better understanding of NS protein degradation might help to improve medical interventions during HCV infections in the future.
Although direct-acting antiviral medications effectively cure hepatitis C in most patients, sometimes treatment selects for resistant viruses, causing antiviral drugs to be either ineffective or only partially effective. Multidrug resistance is common in patients for whom DAA treatment fails. Older patients and patients with advanced liver diseases are more likely to select drug-resistant viruses. Collective efforts from international communities and governments are needed to develop an optimal approach to managing drug resistance and preventing the transmission of resistant viruses.
Mit 71 Millionen chronisch erkrankten Patienten im Jahr 2015 stellt die chronische Hepatitis C-Virusinfektion eine wichtige Ursache für Zirrhose, Leberdekompensation und Leberkrebs dar.
Eine grundlegende Eigenschaft des Hepatitis C-Virus (HCV) ist die Biogenese modifizierter intrazellulärer Membranen. Das dabei aus dem endoplasmatischen Reticulum (ER) gebildete, sogenannte membranöse Netz (MW, membranous web) dient im Rahmen des HCV-Lebenszyklus als Gerüst für die Assemblierung eines Multi-Protein-Replikase-Komplexes. Das MW wird durch virale nicht-strukturelle Proteine wie NS5A induziert.
Das Multidomänen-Metalloprotein NS5A ist über seine verschiedenen Domänen sowohl bei der Replikation am MW als auch bei der viralen Assemblierung und Freisetzung in der Nähe von Lipidtropfen (LD, lipid droplet) maßgeblich beteiligt. Seine N-terminale amphipathische Helix (AH) spielt dabei über die vermittelte Assoziation von NS5A mit Membranen eine wichtige Rolle. Damit verbundene spezifische Lipidinteraktionen von NS5A unterliegen molekularen Umstrukturierungen, die benötigt werden, um NS5A für seine
verschiedenen Aufgaben im viralen Lebenszyklus anzupassen. Es liegen zwar Röntgen-strukturmodelle von Domäne 1-Dimeren und NMR-Strukturen zur AH vor, allerdings keine experimentellen Strukturen des NS5A-Proteins vollständiger Länge (NS5A fl) in seinem natürlichen Lipidmilieu. Trotz der essentiellen Bedeutung von NS5A für den HCV-Lebens-zyklus und langjähriger Forschung ist bisher nur wenig zur molekularen Funktionsweise von NS5A bekannt.
Dennoch konnten durch Screening hochpotente NS5A-Inhibitoren entdeckt und weiterentwickelt werden. NS5A-Inhibitoren tragen als direkt wirkende antivirale Arzneimittel(DAA, direct-acting antiviral) entscheidend zum Therapieerfolg bei der Behandlung der Hepatitis C bei. Trotz ihrer Bedeutung in der Therapie und intensiver Forschung ist der Wirk-mechanismus von NS5A-Inhibitoren bisher ungeklärt. Eine durch NS5A-Inhibitoren
induzierte intrazelluläre Umverteilung von NS5A und das ausschließliche Auftreten von Resistenz-assoziierten Mutationen (RAM) nahe der NS5A-Lipid-Interaktionsbereiche weisen jedoch auf einen Effekt der Inhibitoren auf die Lipid-NS5A-Interaktion hin.
Als grundlegende Hypothese dieser Arbeit wurde somit vermutet, dass abhängig vom NS5A umgebenden Lipidmilieu (MW oder LD) spezifische Lipid-Protein-Interaktionen Einfluss auf die Struktur und Funktion von NS5A nehmen und NS5A-Inhibitoren über eine Inhibition dieser Interaktionen wirken. Polyphosphoinositide (PPI) könnten dabei als Lipidinteraktionspartner eine besondere Rolle spielen, da sie bedeutend für die Membran-Kennzeichnung verschiedener Zellkompartimente sind und auch die Funktion von Membranproteinen regulieren können. Eine Interaktion von NS5A mit PtdIns(4,5)P2 wurde bereits publiziert.
Um basierend auf der postulierten Hypothese die mechanistischen Details im Wechselspiel von NS5A und intrazellulären Membranen sowie den dabei möglichen Effekt von
NS5A-Inhibitoren zu untersuchen, musste zunächst NS5A in ausreichender Menge, Reinheit und Qualität rekombinant hergestellt werden. Hierfür wurde ein entsprechendes Protokoll zur Proteinexpression durch Baculovirus-vermittelte Expression in Sf9-Insektenzellen und Strep-Tactin-Reinigung für das full length Protein und trunkierte Varianten etabliert.
In Kooperation mit einem Partner konnte unter Verwendung von giant unilamellar vesicles (GUVs) und konfokaler Mikroskopie gezeigt werden, dass unser full length Protein die Struktur von Membranen verändert (Membran-Remodellierung).
Die Stabilität des gereinigten Proteins und damit Effekte auf die Proteinfaltung wurden mittels Thermal shift assay (TSA) untersucht und dabei auch Effekte des NS5A-Inhibitors
Daclatasvir (DCV) und des Metall-Chelators EDTA überprüft. Die Bindung des Inhibitors hatte einen stabilisierenden Effekt auf die Proteinstruktur zur Folge.
Potentielle Interaktionsmuster mit Membranlipiden wurden mit Hilfe eines Protein lipid overlay assays (PLOA) detektiert. Zusätzlich zum in der Literatur bereits beschriebenen
Interaktionspartner PtdIns(4,5)P2 konnten weitere Lipid-Bindungspartner für NS5A identifiziert werden. Dabei legen die gewonnenen Daten nahe, dass die Interaktion über die Domäne 1 von NS5A vermittelt wird, wobei die Domänen 2 und 3 die Affinität zu den Lipidbindungspartnern erhöht, aber nicht das Phospholipid-Bindungsmuster verändert.
DCV hatte im PLOA keine qualitativen Auswirkungen auf das Lipid-Bindungsmuster. Die Lipidinteraktionen wurden mittels eines Liposomen-Rekonstitutionsmodells validiert.
In silico konnten basierend auf verfügbaren, experimentellen Strukturdaten und einem dynamischen Modell drei Cluster basischer Aminosäuren in NS5A-D1-AH als mögliche
PPI-Bindungsstellen identifiziert werden. Basierend auf dem Strukturmodell wurde eine Mutationsstrategie zur Charakterisierung der potentiellen PPI-Bindungsstellen entwickelt.
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