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In the last two decades, our understanding of human gene regulation has improved tremendously. There are plentiful computational methods which focus on integrative data analysis of humans, and model organisms, like mouse and drosophila. However, these tools are not directly employable by researchers working on non-model organisms to answer fundamental biological, and evolutionary questions. We aimed to develop new tools, and adapt existing software for the analysis of transcriptomic and epigenomic data of one such non-model organism, Paramecium tetraurelia, an unicellular eukaryote. Paramecium contains two diploid (2n) germline micronuclei (MIC) and a polyploid (800n) somatic macronuclei (MAC). The transcriptomic and epigenomic regulatory landscape of the MAC genome, which has 80% protein-coding genes and short intergenic regions, is poorly understood.
We developed a generic automated eukaryotic short interfering RNA (siRNA) analysis tool, called RAPID. Our tool captures diverse siRNA characteristics from small RNA sequencing data and provides easily navigable visualisations. We also introduced a normalisation technique to facilitate comparison of multiple siRNA-based gene knockdown studies. Further, we developed a pipeline to characterise novel genome-wide endogenous short interfering RNAs (endo-siRNAs). In contrary to many organisms, we found that the endo-siRNAs are not acting in cis, to silence their parent mRNA. We also predicted phasing of siRNAs, which are regulated by the RNA interference (RNAi) pathway.
Further, using RAPID, we investigated the aberrations of endo-siRNAs, and their respective transcriptomic alterations caused by an RNAi pathway triggered by feeding small RNAs against a target gene. We find that the small RNA transcriptome is altered, even if a gene unrelated to RNAi pathway is targeted. This is important in the context of investigations of genetically modified organisms (GMOs). We suggest that future studies need to distinguish transcriptomic changes caused by RNAi inducing techniques and actual regulatory changes.
Subsequently, we adapted existing epigenomics analysis tools to conduct the first comprehensive epigenomic characterisation of nucleosome positioning and histone modifications of the Paramecium MAC. We identified well positioned nucleosomes shifted downstream of the transcription start site. GC content seems to dictate, in cis, the positioning of nucleosomes, histone marks (H3K4me3, H3K9ac, and H3K27me3), and Pol II in the AT-rich Paramecium genome. We employed a chromatin state segmentation approach, on nucleosomes and histone marks, which revealed genes with active, repressive, and bivalent chromatin states. Further, we constructed a regulatory association network of all the aforementioned data, using the sparse partial correlation network technique. Our analysis revealed subsets of genes, whose expression is positively associated with H3K27me3, different to the otherwise reported negative association with gene expression in many other organisms.
Further, we developed a Random Forests classifier to predict gene expression using genic (gene length, intron frequency, etc.) and epigenetic features. Our model has a test performance (PR-AUC) of 0.83. Upon evaluating different feature sets, we found that genic features are as predictive, of gene expression, as the epigenetic features. We used Shapley local feature explanation values, to suggest that high H3K4me3, high intron frequency, low gene length, high sRNA, and high GC content are the most important elements for determining gene expression status.
In this thesis, we developed novel tools, and employed several bioinformatics and machine learning methods to characterise the regulatory landscape of the Paramecium’s (epi)genome.
Die Verfügbarkeit synthetischer Oligonukleotide hat der Entwicklung einer Vielzahl molekularbiologischer, biochemischer und medizinischer Anwendungen den Weg geebnet. Und sind viele diese Anwendungen für sich genommen schon hochinteressant, so eröffnet die Kombination mehrerer Methoden oft noch ganz neue Möglichkeiten. In der vorliegenden Doktorarbeit ist es gelungen, die Technik der photolabilen Schützung auf die Anwendungen von siRNAs und molecular beacons zu übertragen und diesen damit die Option der orts- und zeitaufgelösten Aktivierung zu ermöglichen. Durch die Einführung eines Nukleotids mit 2-(2-nitrophenyl)propyl-geschützter Nukleobase in eine siRNA, konnte der katalytische Schritt der RNA-Interferenz, die mRNA-Spaltung, unterbunden werden. Hierzu wurde das photolabil modifizierte Nukleotid so in der siRNA positioniert, dass es gegenüber der mRNA-Schnittstelle bzw. in unmittelbarerer Nachbarschaft zu dieser lag. Dabei war das modifizierte Nukleotid selbst kein Ribonukleotid sondern ein Desoxynukleotid. Zuvor konnte gezeigt werden, dass die Einführung einzelner Desoxynukleotide in eine siRNA keinerlei Einfluss auf deren Aktivität hat. Als Modellsystem diente der RFP/eGFP-Reportergenassay, wobei die Plasmide mit der siRNA in die verwendeten HeLa-Zellen kotransfiziert wurden. Die verwendete siRNA regulierte dabei die eGFP-mRNA, die gemessene Fluoreszenz wurde auf die RFP-Fluoreszenz normiert. In der Studie gelang es, ein sauberes „An/Aus-Verhalten“ zu erzielen, das heißt, die modifizierte siRNA zeigte zunächst keinerlei Einfluss auf die eGFP-mRNA. Bestrahlte man diese siRNA jedoch für drei Minuten bei 366 nm, erzielte man eine Unterdrückung der eGFP-Expression, die der einer unmodifizierten siRNA entsprach. Dies funktionierte für vor der Transfektion bestrahlte siRNAs ebenso, wie für solche, die erst nach der Transfektion in der Zelle entschützt wurden. Vereinfachte Darstellung der lichtaktivierbaren RNA Interferenz. Links: solange die Photoschutzgruppe (rot) auf dem Führungsstrang sitzt wird das Substrat des RISC nicht geschnitten. Rechts: Bestrahlung mit UV-Licht entfernt die Photoschutzgruppe und aktiviert die RNAi-Maschinerie. Ein bis jetzt ungeklärtes und noch näher zu untersuchendes Phänomen ist die Stabilität der Modifikationen in der Zelle. Aus bisher nicht eindeutig zu benennender Ursache fand nach einer definierten Zeit eine Aktivierung der ausgeschalteten siRNA statt, ohne dass diese bestrahlt wurde. Versuche mit photolabil modifizierten Nukleotiden an anderen Positionen innerhalb der siRNA, sowie eine Fluoreszenz-Korrelationsspektroskopie-Studie mit fluoreszenzmarkierter siRNA und fluoreszenzmarkiertem RISC erlaubten es Rückschlüsse auf den Schritt der RNAi zu ziehen, der durch die Einführung der Basenmodifikation blockiert wird. Offenbar handelt es sich tatsächlich um den katalytischen Schritt der mRNA-Spaltung, ein Einbau der modifizierten siRNA in den RISC findet statt. Zudem zeigte die erfolgreiche Inaktivierung der für die FCS-Studie genutzten anti-TK siRNA, dass der Ansatz, die Modifikation im Bereich der Schnittstelle einzubauen, von der anti-eGFP siRNA auf andere siRNAs übertragbar ist. Im zweiten erfolgreichen Projekt gelang es, molecular beacons durch Einführung zahlreicher photolabiler Basenmodifikationen lichtaktivierbar zu machen. Hierzu wurde ein bereits beschriebener GAPDH-molecular beacon verwendet. Modifiziert man die Schleife dieses molecular beacon mit sieben photolabilen Basenschutzgruppen (NPP und NPE) so gelingt es die Bindung desselben an seine komplementäre Ziel-RNA komplett zu unterbinden, während ein GAPDH-beacon mit drei oder fünf Modifikationen noch in verringertem Maße bindungsfähig ist. Dieses Verhalten wurde sowohl mittels einfachen Auslesens der Fluoreszenzintensität, als auch anhand eines PA-Geles belegt. Eine große Herausforderung bei diesem Projekt stellte die Aufreinigung des hochmodifizierten molecular beacon dar, der neben Fluorophor und Quencher auch zahlreiche Photoschutzgruppen trägt. Diese gelang schließlich durch den Einsatz einer extra densely bond-RP-HPLC-Säule und wiederholter HPL-Chromatographie. Ebenfalls konnte der große Vorteil eines lichtaktivierbaren molecular beacon, die Möglichkeit der präzisen Ortsauflösung der Aktivierung, dargestellt werden. Hierzu wurde modellhaft die Ziel-RNA auf einer Objektträgeroberfläche immobilisiert. Die dann aufgetragene molecular beacon-Lösung zeigte zunächst keine Fluoreszenz. Diese trat erst nach Bestrahlung und auch nur begrenzt auf den wenige Quadratmikrometer großen Bestrahlungsbereich auf.
The Asian tiger mosquito Aedes albopictus is currently spreading across Europe, facilitated by climate change and global transportation. It is a vector of arboviruses causing human diseases such as chikungunya, dengue hemorrhagic fever and Zika fever. For the majority of these diseases, no vaccines or therapeutics are available. Options for the control of Ae. albopictus are limited by European regulations introduced to protect biodiversity by restricting or phasing out the use of pesticides, genetically modified organisms (GMOs) or products of genome editing. Alternative solutions are thus urgently needed to avoid a future scenario in which Europe faces a choice between prioritizing human health or biodiversity when it comes to Aedes-vectored pathogens. To ensure regulatory compliance and public acceptance, these solutions should preferably not be based on chemicals or GMOs and must be cost-efficient and specific. The present review aims to synthesize available evidence on RNAi-based mosquito vector control and its potential for application in the European Union. The recent literature has identified some potential target sites in Ae. albopictus and formulations for delivery. However, we found little information concerning non-target effects on the environment or human health, on social aspects, regulatory frameworks, or on management perspectives. We propose optimal designs for RNAi-based vector control tools against Ae. albopictus (target product profiles), discuss their efficacy and reflect on potential risks to environmental health and the importance of societal aspects. The roadmap from design to application will provide readers with a comprehensive perspective on the application of emerging RNAi-based vector control tools for the suppression of Ae. albopictus populations with special focus on Europe.
In eukaryotes, double-stranded (ds) RNA induces sequence-specific inhibition of gene expression referred to as RNA interference (RNAi). We exploited RNAi to define the role of HER2/neu in the neoplastic proliferation of human breast cancer cells. We transfected SK-BR-3, BT-474, MCF-7, and MDA-MB-468 breast cancer cells with short interfering RNA (siRNA) targeted against human HER2/neu and analyzed the specific inhibition of HER2/neu expression by Northern and Western blots. Transfection with HER2/neu-specific siRNA resulted in a sequence-specific decrease in HER2/neu mRNA and protein levels. Moreover, transfection with HER2/neu siRNA caused cell cycle arrest at G0/G1 in the breast cancer cell lines SKBR-3 and BT-474, consistent with a powerful RNA silencing effect. siRNA treatment resulted in an antiproliferative and apoptotic response in cells overexpressing HER2/neu, but had no influence in cells with almost no expression of HER2/neu proteins like MDA-MB-468 cells. These data indicate that HER2/neu function is essential for the proliferation of HER2/neuoverexpressing breast cancer cells. Our observations suggest that siRNA targeted against human HER2/neu may be valuable tools as anti proliferative agents that display activity against neoplastic cells at very low doses.
Ideale universelle Nucleosid-Analoga könnten im Hinblick auf therapeutische Oligonucleotide einen Fortschritt in der Entwicklung darstellen. Zudem bieten solche Nucleosidanaloga auch aus synthetischer Sicht Vorteile: Durch ihre Struktur sind chemische Modifikationen – wie beispielsweise Modifizierungen an der Zuckereinheit – leichter zugänglich, als bei den natürlichen Nucleosiden. Ein Ziel der vorliegenden Doktorarbeit bestand darin, bereits bekannte universelle Nucleosidbausteine solchermaßen zu modifizieren, das bei ihrer Anwendung in Oligonucleotiden ihre Vorteile besser zum Tragen kommen. Vor diesem Hintergrund besaßen vor allem protonierbare 2´-O-Modifikationsmotive eine besondere Relevanz. Im Vergleich zur bereits bekannten 2´-O-Aminoethyl-Modifikation des 4,6-Difluorbenzimidazol-Nucleosidbausteins konnte eine um eine Methyleneinheit längere 2´-O-Aminopropylfunktion des Nucleosids hergestellt werden. Dabei wurde eine Syntheseroute eingeschlagen, mit der diese Modifikation in hohen Ausbeuten und hoher Reinheit aus dem 3´-,5´-Markiewicz-geschützten Nucleosid eingeführt werden konnte. Grundlage dieser Modifizierungsmethode ist eine Michael-Addition von Acrylnitril an die 2´-OH-Funktion unter basischen Bedingungen. Damit konnte ein 2´-O-Cyanoethylrest an das Nucleosid geknüpft werden; dieser wurde als Modifikationsmotiv beibehalten und es konnte das entsprechende 3´-Phosphoramidit hergestellt werden. Außerdem lässt sich ein 2´-O-Cyanoethylrest mittels Raney-Nickel-katalysierter Hydrierung in das primäre Amin überführen. Durch diese Michael-Addition-Reduktionssequenz konnte die erwähnte 2´-O-Aminopropylmodifikation in nur zwei Stufen mit einer Gesamtausbeute von über 80 % an das Difluorbenzimidazolnucleosid geknüpft werden. Die 2´-O-Aminopropylfunktion wurde zudem als Ausgangspunkt zur Kupplung weiterer erfolgsversprechender Modifikationsmotiven verwendet: In diesem Ansatz wurden mittels standardisierter Peptidkupplungschemie Carbonsäurederivate an die freie Aminofunktion gekuppelt. Hierdurch waren neuartige 2´-O-Modifizierungen, wie z.B. Lysin- oder auch Laurinsäurekonjugate zugänglich; diese waren über den Propylamidlinker mit dem Nucleosid verbunden. Im Hinblick einer polykationischen Modifizierung konnte auch ein Sperminderivat an die Aminopropylfunktion gekuppelt werden. Sämtliche dieser Konjugate konnten ebenfalls nach mehrstufigen Synthesen in das 3´-Phosphoramidit überführt werden und wurden schließlich erfolgreich in RNA-Oligonucleotide eingebaut. Für den Einbau der 2´-modifizierten universellen Nucleosidanaloga in RNA-Oligonucleotide wurden zunächst kurze 12mer-Sequenzen gewählt, die sich bereits als gute Testsysteme für spektroskopische Untersuchungen herausgestellt haben. Hernach konnten mit diesen Duplexen spektroskopische Untersuchungen wie UV-Schmelzkurvenanalysen und CD-Spektroskopie durchgeführt werden. Zudem stand die biologische Testung dieser Modifikationen in synthetisch zugänglichen siRNA-Oligonucleotiden im Fokus dieser Arbeit. Um die Flexibilität der Konjugationsmethode zu erhöhen konnte auch eine postsynthetische Kupplung an das festphasengebundene RNA-Oligomer etabliert werden. Dies wurde durch den Einbau des geeignet geschützten 2´-Aminopropyl-Nucleosidbausteins in ein RNA-Oligomer erreicht: Durch einfache Zugabe von Bocanhydrid in den Reduktionsansatzes gelang eine simultane Boc-Schützung des 2´-O-Aminopropylderivats in quantitativer Ausbeute. Diese Prozedur konnte auch auf ein 7N-Purinnucleosidanalogon übertragen werden, welches im Hinblick auf die thermodynamische Stabilisierung eines RNA-Duplexes einem 4,6-Difluorbenzimidazolbaustein gegenüber überlegen zu sein scheint. Die Boc-geschützen Derivate wurden als Phosphoramidite in die automatisierte Festphasensynthese von Oligonucleotiden eingesetzt. Der große synthetische Vorteil dieser Methode besteht einerseits in ihrer einfachen Durchführbarkeit, andererseits in ihrer effizienteren und ökonomischeren Vorbereitung: Es muss nur jeweils ein Phosphoramiditbaustein (mit Boc-geschützter 2´-O-Aminopropylfunktion) synthetisiert und in ein Oligonucleotid eingebaut werden. Sowohl mit dem 4,6-Difluorbenzimidazolnucleosid, als auch mit seinem 7N-Purin-Pendant konnten erfolgreiche Festphasenkupplungen durchgeführt werden. Im Hinblick auf die thermodynamischen Eigenschaften konnten vor allem für das 7N-Purinnucleosid interessante Resultate erzielt werden: Das via Festphasenkupplung erhaltene RNA-12mer, welches eine Argininmodifikation am 2´-O-Aminopropyl-7N-Purinnucleosid trägt, zeigt eine im Vergleich zum unmodifizierten A-U-Basenpaar ähnliche Stabilität bei leicht erhöhtem Tm-Wert. Um den Ursprung dieses Effekts genauer zu ergründen wären weitere thermo-dynamische Untersuchungen anhand des 7N-Purinbausteines z.B. mit anderen Modifikations-motiven oder auch an unterschiedlichen Positionen im Oligomer sinnvoll.
The role of RNA interference in the developmental separation of blood and lymphatic vasculature
(2014)
Background: Dicer is an RNase III enzyme that cleaves double stranded RNA and generates functional interfering RNAs that act as important regulators of gene and protein expression. Dicer plays an essential role during mouse development because the deletion of the dicer gene leads to embryonic death. In addition, dicer-dependent interfering RNAs regulate postnatal angiogenesis. However, the role of dicer is not yet fully elucidated during vascular development.
Methods: In order to explore the functional roles of the RNA interference in vascular biology, we developed a new constitutive Cre/loxP-mediated inactivation of dicer in tie2 expressing cells.
Results: We show that cell-specific inactivation of dicer in Tie2 expressing cells does not perturb early blood vessel development and patterning. Tie2-Cre; dicerfl/fl mutant embryos do not show any blood vascular defects until embryonic day (E)12.5, a time at which hemorrhages and edema appear. Then, midgestational lethality occurs at E14.5 in mutant embryos. The developing lymphatic vessels of dicer-mutant embryos are filled with circulating red blood cells, revealing an impaired separation of blood and lymphatic vasculature.
Conclusion: Thus, these results show that RNA interference perturbs neither vasculogenesis and developmental angiogenesis, nor lymphatic specification from venous endothelial cells but actually provides evidence for an epigenetic control of separation of blood and lymphatic vasculature.