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Membrane-bound complex I (NADH:ubiquinone oxidoreductase) of the respiratory chain is considered the main site of mitochondrial radical formation and plays a major role in many mitochondrial pathologies. Structural information is scarce for complex I, and its molecular mechanism is not known. Recently, the 49-kDa subunit has been identified as part of the "catalytic core" conferring ubiquinone reduction by complex I. We found that the position of the 49-kDa subunit is clearly separated from the membrane part of complex I, suggesting an indirect mechanism of proton translocation. This contradicts all hypothetical mechanisms discussed in the field that link proton translocation directly to redox events and suggests an indirect mechanism of proton pumping by redox-driven conformational energy transfer.
Cardiolipin stabilized supercomplexes of Saccharomyces cerevisiae respiratory chain complexes III and IV (ubiquinol:cytochrome c oxidoreductase and cytochrome c oxidase, respectively), but was not essential for their formation in the inner mitochondrial membrane because they were found also in a cardiolipin-deficient strain. Reconstitution with cardiolipin largely restored wild-type stability. The putative interface of complexes III and IV comprises transmembrane helices of cytochromes b and c1 and tightly bound cardiolipin. Subunits Rip1p, Qcr6p, Qcr9p, Qcr10p, Cox8p, Cox12p, and Cox13p and cytochrome c were not essential for the assembly of supercomplexes; and in the absence of Qcr6p, the formation of supercomplexes was even promoted. An additional marked effect of cardiolipin concerns cytochrome c oxidase. We show that a cardiolipin-deficient strain harbored almost inactive resting cytochrome c oxidase in the membrane. Transition to the fully active pulsed state occurred on a minute time scale.
Pin1 is a peptidyl-prolyl cis/trans isomerase (PPIase) essential for cell cycle regulation. Pin1-catalyzed peptidyl-prolyl isomerization provides a key conformational switch to activate phosphorylation sites with the common phospho-Ser/Thr-Pro sequence motif. This motif is ubiquitously exploited in cellular response to a variety of signals. Pin1 is able to bind phospho-Ser/Thr-Pro-containing sequences at two different sites that compete for the same substrate. One binding site is located within the N-terminal WW domain, which is essential for protein targeting and localization. The other binding site is located in the C-terminal catalytic domain, which is structural homologous to the FK506-binding protein (FKBP) class of PPIases. A flexible linker of 12 residues connects the WW and catalytic domain. To characterize the structure and dynamics of full-length Pin1 in solution, high resolution NMR methods have been used to map the nature of interactions between the two domains of Pin1. In addition, the influence of target peptides on domain interactions has been investigated. The studies reveal a dynamic picture of the domain interactions. 15N spin relaxation data, differential chemical shift mapping, and residual dipolar coupling data indicate that Pin1 can either behave as two independent domains connected by the flexible linker or as a single intact domain with some amount of hinge bending motion depending on the sequence of the bound peptide. The functional importance of the modulation of relative domain flexibility in light of the multitude of interaction partners of Pin1 is discussed.
Na,K-ATPase mediates net electrogenic transport by extruding three Na+ ions and importing two K+ ions across the plasma membrane during each reaction cycle. We mutated putative cation coordinating amino acids in transmembrane hairpin M5-M6 of rat Na,K-ATPase: Asp776 (Gln, Asp, Ala), Glu779 (Asp, Gln, Ala), Asp804 (Glu, Asn, Ala), and Asp808 (Glu, Asn, Ala). Electrogenic cation transport properties of these 12 mutants were analyzed in two-electrode voltage-clamp experiments on Xenopus laevis oocytes by measuring the voltage dependence of K+-stimulated stationary currents and pre-steady-state currents under electrogenic Na+/Na+ exchange conditions. Whereas mutants D804N, D804A, and D808A hardly showed any Na+/K+ pump currents, the other constructs could be classified according to the [K+] and voltage dependence of their stationary currents; mutants N776A and E779Q behaved similarly to the wild-type enzyme. Mutants E779D, E779A, D808E, and D808N had in common a decreased apparent affinity for extracellular K+. Mutants N776Q, N776D, and D804E showed large deviations from the wild-type behavior; the currents generated by mutant N776D showed weaker voltage dependence, and the current-voltage curves of mutants N776Q and D804E exhibited a negative slope. The apparent rate constants determined from transient Na+/Na+ exchange currents are rather voltage-independent and at potentials above -60 mV faster than the wild type. Thus, the characteristic voltage-dependent increase of the rate constants at hyperpolarizing potentials is almost absent in these mutants. Accordingly, dislocating the carboxamide or carboxyl group of Asn776 and Asp804, respectively, decreases the extracellular Na+ affinity.
We report the first evidence for the formation of the "607- and 580-nm forms" in the cytochrome oxidase aa3/H2O2 reaction without the involvement of tyrosine 280. The pKa of the 607-580-nm transition is 7.5. The 607-nm form is also formed in the mixed valence cytochrome oxidase/O2 reaction in the absence of tyrosine 280. Steady-state resonance Raman characterization of the reaction products of both the wild-type and Y280H cytochrome aa3 from Paracoccus denitrificans indicate the formation of six-coordinate low spin species, and do not support, in contrast to previous reports, the formation of a porphyrin pi-cation radical. We observe three oxygen isotope-sensitive Raman bands in the oxidized wild-type aa3/H2O2 reaction at 804, 790, and 358 cm-1. The former two are assigned to the Fe(IV)[double bond]O stretching mode of the 607- and 580-nm forms, respectively. The 14 cm-1 frequency difference between the oxoferryl species is attributed to variations in the basicity of the proximal to heme a3 His-411, induced by the oxoferryl conformations of the heme a3-CuB pocket during the 607-580-nm transition. We suggest that the 804-790 cm-1 oxoferryl transition triggers distal conformational changes that are subsequently communicated to the proximal His-411 heme a3 site. The 358 cm-1 mode has been found for the first time to accumulate with the 804 cm-1 mode in the peroxide reaction. These results indicate that the mechanism of oxygen reduction must be reexamined.
Seit der TIMSS- und PISA-Studie sind sie wieder einmal Thema der bildungspolitischen Diskussion: die naturwissenschaftlichen Fächer in unseren Schulen. Deutschen Schülerinnen und Schülern wird bescheinigt: Sie haben nur mangelnde Kenntnisse, verstehen zu wenig, sind nicht recht in der Lage, Fragestellungen methodisch anzugehen, und denken zu wenig darüber nach, wie sie naturwissenschaftliche Probleme lösen könnten. Aber auch viele Erwachsene geben offen zu, besonders von den »harten« Naturwissenschaften wie Chemie wenig zu verstehen und sich nie besonders dafür interessiert zu haben. Wie kommt es, dass eine Wissenschaft, die wesentlich zum Verständnis unserer stofflichen Umwelt beiträgt und deren praktische Anwendung unser tägliches Leben in hohem Maße beeinflusst, auf ein so geringes Interesse stößt?
Chemiker stehen in ihrer Mentalität Architekten nahe: Sie planen und bauen Moleküle. Schon lange, bevor der atomare Aufbau der Materie experimentell bewiesen war, entwickelten sie genaue Vorstellungen über die Raumstruktur von Molekülen. Erst zu Beginn des 20.Jahrhunderts wurden diese "Arbeitshypothesen" – zum Beispiel das von Jacobus van’t Hoff postulierte Tetraedermodell für den vierbindigen Kohlenstoff – von den Physikern glänzend bestätigt. Zwar ist es mittlerweile möglich, die Struktur von unbekannten Molekülen zuverlässig vorherzusagen; doch nach wie vor sind genaue experimentelle Strukturbestimmungen ein unverzichtbarer Bestandteil vieler Forschungsprojekte.
Die Organische Synthese – also die Kunst, aus einfachen Molekülen gezielt komplexe Moleküle herzustellen – war immer schon sowohl von akademischem als auch von industriellem Interesse, wie schon die Anfänge der Farbenindustrie beweisen. Ohne organische Synthese wäre eine Indigoproduktion oder die Herstellung von Anilinfarben aus Steinkohlenteer zu Beginn des vergangenen Jahrhunderts undenkbar gewesen. Die enge Verbindung zwischen Wissenschaft und Technologie auf dem Gebiet der organischen Synthese zieht sich wie ein roter Faden durch die Chemie bis hin zu den aktuellen biologischen oder materialwissenschaftlichen Fragestellungen. So ist die Entwicklung von Wirkstoffen – sei es für Arznei- oder Pflanzenschutzmittel – auch heute ohne organische Synthese undenkbar.
Lipide sind essentielle Strukturelemente von Zellen. Sie sind unter anderem Hauptbestandteil von Membranen, die einerseits verschiedene Kompartimente innerhalb der Zelle gegeneinander abgrenzen und andererseits die Zelle nach außen abschotten. Membranen regulieren den Transport von Ionen, kleinen polaren Molekülen sowie peptidartigen Botenstoffen, da sie für viele Bestandteile des Organismus nicht oder nur wenig durchlässig (permeabel) sind.
Wie findet man einen neuen Wirkstoff? Die pharmazeutisch-chemische Forschung steht mit diesem Vorhaben vor einer scheinbar unlösbaren Aufgabe, denn der "chemische Raum" aller wirkstoffartigen Moleküle ist unvorstellbar groß. So wurde geschätzt, dass man prinzipiell aus 1060 bis 10100 verschiedenen Verbindungen die geeigneten Kandidaten auswählen kann. Zum Vergleich: Seit dem Urknall sollen "nur" etwa 10 hoch 18 Sekunden, etwa 14 Milliarden Jahre, vergangen sein. Dies bedeutet, dass der chemische Raum praktisch unendlich ist. Aus dieser Überlegung lassen sich zumindest zwei Schlussfolgerungen ziehen: Zum einen gibt es die begründete Hoffnung, dass ein Molekül mit der gewünschten Aktivität existiert, zum anderen stellt sich die Frage, wie diese unvorstellbar große Zahl chemischer Verbindungen systematisch durchmustert werden kann? Doch die Situation ist nicht so hoffnungslos, wie sie auf den ersten Blick erscheint. Dies zeigt die erfolgreiche Entwicklung immer neuer Medikamente. Das Forschungsgebiet der Chemieinformatik befasst sich mit der Entwicklung von intelligenten Lösungsansätzen, die Chemikern bei dieser Suche nach den "Nadeln im riesigen Heuhaufen" helfen können.